一、試劑與耗材的源頭把控

 

　　試劑盒的核心是抗體對的特異性與包被板的均一性。首先需核查試劑有效期及儲存條件（通常-20℃避光保存，避免反復(fù)凍融），復(fù)溶后的標準品應(yīng)分裝凍存以減少降解。關(guān)鍵耗材如96孔板需確認無劃痕或污染，移液器需定期校準精度（誤差≤2%），吸頭需選用低吸附型以避免樣本損失。此外，樣本的預(yù)處理直接影響檢測靈敏度：血清/血漿需離心去除纖維蛋白，細胞上清需避免反復(fù)凍融，必要時添加蛋白酶抑制劑防止白介素降解。

 

　　二、實驗操作的精準執(zhí)行

 

　　加樣環(huán)節(jié)需嚴格遵循“慢吸快打”原則，避免氣泡產(chǎn)生；標準品梯度稀釋應(yīng)使用同一支移液器，確保濃度線性（R²≥0.99）；孵育溫度與時間需精準控制（如37℃孵育30分鐘或室溫1小時），避免因溫場不均導(dǎo)致結(jié)合效率差異。洗滌步驟是降低背景值的關(guān)鍵，建議采用多道洗板機并設(shè)置8-10次洗滌循環(huán)，手工洗滌時需保證每孔液體全拍干，避免殘留洗滌液干擾顯色。顯色階段需嚴格控制底物孵育時間（如A、B液混合后避光反應(yīng)10-15分鐘），超時易導(dǎo)致信號飽和或淬滅。

 

　　三、數(shù)據(jù)判讀的科學(xué)驗證

 

　　標準曲線是定量的基礎(chǔ)，需重點關(guān)注低濃度區(qū)（接近檢測限）的擬合度，若某點偏離趨勢需重測；樣本OD值需落在標準曲線的中段線性范圍（通常為標準品最高濃度的1/10至9/10），超出范圍需稀釋后復(fù)測。同時，每批次實驗應(yīng)設(shè)置空白對照（僅加稀釋液）、陰性對照（健康小鼠血清）及重復(fù)孔（CV≤10%），以排除系統(tǒng)誤差。對于關(guān)鍵指標（如炎癥模型中IL-6的動態(tài)變化），建議通過加標回收實驗（回收率85%-115%）驗證方法準確性。